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广州科适特科学仪器有限公司
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简化步骤,快速一体化免疫荧光实验方案
人阅读 发布时间:2023-08-23 09:51
免疫荧光技术是在免疫学、生物化学和显微镜技术的基础上建立起来的一项技术。传统实验方法用小玻片,先泡酸、再晾干、再 coating、再种细胞、染色、封片成像。
本文章介绍新方法,我们将描述在通道载玻片内培养大鼠成纤维细胞(Rat1)的单个实验案例。然后,我们用AlexaFluor®488鬼笔环肽染色F-肌动蛋白细胞骨架,并用DAPI对细胞核进行复染。
该实验包括四个主要步骤:
1.培养:
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在无菌条件下打开 μ-Slide Ⅵ 0.4、ibiTreat(80606)的包装,并将其放置在μ-Slide架(80003)上。
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在每个通道中加入 30 μl 3×105细胞ml/大鼠成纤维细胞(Rat1)细胞悬液。如下图或我们的网站上所示,直接将移液器加入通道。
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用随附的盖子盖住
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将载玻片放入培养箱(37℃;5%CO2)培养并让细胞附着(60分钟)。然后用60μl无细胞培养基填充两个通道口。
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孵育过夜。
2固定和透化:
在固定和透化过程中要小心,通道永远不要变干!通过用下一个冲洗剩余的溶液来交换通道中的液体。固定:
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使用细胞培养抽吸装置从所有通道口中吸出培养基。用 Dulbecco PBS 洗涤细胞,方法是将200 μl 缓慢加入每个通道的一个空通道口,并从每个通道的相对通道口吸出。不要吸出整个通道体积。
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用约 100 μl 3.7% 多聚甲醛的PBS固定细胞。20分钟后,通过用 200 μl PBS 填充一孔并从另一孔中吸出来冲洗通道内的液体;确保通道永不干涸。
透化和封闭:
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如上所述,用200 μl PBS 再次洗涤细胞
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在 PBS 中用 ~100 μl 0.1% Triton® X-100 3-5 分钟
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用 PBS 洗涤细胞
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用 ~100 μl 封闭溶液(PBS中的 1% BSA)20分钟
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用 PBS 洗涤细胞
3.染色:
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使用抽吸装置从通道中取出所有液体。不要让通道变干。
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吸液后立即加入30 µl Alexa Fluor® 488 鬼笔环肽(在 200 µl PBS 和 1% BSA 中)。用1毫升注射器注射溶液会有所帮助。在室温下孵育20分钟。
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用 PBS 洗涤细胞
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用 30 µl DAPI (0.1 µg/ml) 3-5 分钟。
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用 PBS 清洗细胞并应用ibidi封固培养基,直到通道被填满(约 50μl)。ibidi 封固剂以甘油为基础,并含有用于抗褪色的 DABCO。载玻片可存放约4 周。
4.成像
在荧光显微镜下选择适当的滤镜,也可以使用浸油观察细胞。之所能如此简便完成免疫荧光实验,是因为这些ibidi培养皿和载玻片的底部为特殊处理的材质,绝大多数细胞可以直接贴壁生长,而不需要另外包被。同时,这些耗材的底部薄如盖玻片,可以直接使用倒置显微镜进行观察,得到高质量的成像,适用于显微镜比如共聚焦显微镜。
实验例子:
超分辨率显微镜(STED)观察肌动蛋白细胞骨架µ-Slide VI 0.4与超分辨率显微镜方法兼容,使用 LifeAct-TagGFP2 蛋白,可以详细观察肌动蛋白细胞骨架。在这个实验中,固定的 Rat1 成纤维细胞与 LifeAct-TagGFP2 蛋白一起在 µ-Slide VI 0.4,ibiTreat中孵育。并用 STED 显微镜以创建超分辨率图像。
使用LifeAct-TagGFP2 蛋白对 Rat1 成纤维细胞中的肌动蛋白细胞骨架进行超分辨率显微镜检查。使用 Plan-Neofluar 100x/1.4 物镜在 STEDYCON 超分辨率 STED 纳米显微镜系统(Abberior Instruments GmbH,德国哥廷根)上进行显微镜检查。
μ-Slide VI 0.4用于获取人 BJ 成纤维细胞的共聚焦图像。用 Drp-1 siRNA 转染细胞并用 MitoTracker Red 染色以观察融合的线粒体。
在 ibidi μ-Slide VI 0.4中培养的人 BJ 成纤维细胞的共聚焦显微镜图像。MitoTracker Red(红色)用于可视化线粒体。图片由土耳其伊斯坦布尔哈里克大学医学院的 Fulya Dal Yontem 提供。
用于肌动蛋白可视化的荧光显微镜
在这个例子中,A549 细胞(肺泡上皮细胞)在 μ-Slide VI 0.4,ibiTreat上培养,以研究促炎刺激对细胞骨架重排的影响。将细胞暴露于内毒素 (LPS) 中 4 小时,并用荧光鬼笔环肽染色以观察细胞收缩和细胞间间隙的出现。
A549 细胞在 μ-Slide VI 0.4、ibiTreat 上生长,暴露于内毒素 (LPS) 4 小时,并用荧光鬼笔环肽染色以检测细胞肌动蛋白(红色)。40 倍放大倍率。图片由美国弗吉尼亚州里士满弗吉尼亚联邦大学的 Bernard Fisher 提供。